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Das '''Kauffmann-White-Schema''' (aktuell korrekter, aber unüblicher Name: '''White-Kauffmann-Le-Minor-Schema''') ist ein in der [[Bakteriologie]] verwendetes Klassifizierungssystem für Vertreter der [[Enterobakterien]]-[[Gattung (Biologie)|Gattung]] ''[[Salmonellen|Salmonella]]''. Es erlaubt die [[Serologie|serologische]] Einordnung von [[Varietät (Biologie)|Varietäten]] und [[Serotyp]]en (auch „Serovare“ genannt). Im vollständigen Kauffmann-White-Schema sind über 2500 verschiedene Serovare von ''Salmonella'' klassifiziert. Salmonellen, die eng mit Arten aus der Gattung ''[[Escherichia]]'' verwandt sind, sind [[Pathogen]]e und können sowohl Tiere als auch über die [[Nahrungskette]] Menschen infizieren. [[Infektionskrankheit]]en mit diesem Übertragungsweg werden auch als [[Zoonose]]n bezeichnet.

== Geschichte ==
Im Jahr 1880 entdeckten [[Karl Joseph Eberth]] und [[Robert Koch]] den Erreger des menschlichen [[Typhus]] (damals ''Eberthella typhosa'', heute ''Salmonella typhi'' genannt), 1885 identifizierte [[Daniel Elmer Salmon]], nach dem die Gattung ''Salmonella'' benannt wurde, den Erreger der „Schweinecholera“ ''(S. choleraesuis)''. Bei Tieren wurden weitere ''Salmonella''-Arten (etwa ''S. typhimurium'' (Mäusetyphus) und ''S. abortusovis'' ([[Fehlgeburt|Abort]] des Schafs)) gefunden. Mit den klassischen Methoden der Mikrobiologie – beispielsweise biochemische Charakteristika wie Unterschiede in der Verwertung verschiedener Zucker (siehe auch [[Bunte Reihe (Labor)|Bunte Reihe]]) – ließen sich diese Erreger aufgrund ihrer engen Verwandtschaft nicht voneinander unterscheiden. Nur anhand serologischer Merkmale war eine Klassifizierung dieser Erregergruppe möglich. 
1926 veröffentlichte der britische [[Bakteriologie|Bakteriologe]] [[Philip Bruce White]] ein Schema zur Klassifikation von Salmonellen auf serologischer Basis,<ref>P.B. White: ''Further Studies of the ''Salmonella'' Group''. Great Britain Medical Research Council 103 (Her Majesty’s Stationery Office), 3-160, 1926.</ref> das vom deutsch-dänischen Bakteriologen [[Fritz Kauffmann (Mediziner)|Fritz Kauffmann]] von 1933 bis 1978<ref>F. Kauffmann: ''Das Fundament'', Munksgaard, Kopenhagen, 1978.</ref> ausgebaut und erweitert wurde. Diese Erweiterung findet auch heute noch statt, im Abstand von einigen Jahren publiziert der französische Bakteriologe [[Michel Popoff]] eine Aktualisierung des Schemas. Die letzte Aktualisierung wurde 2007 veröffentlicht.<ref>M. Y. Popoff, J. Bockemühl, L. L. Gheesling: ''Supplement 2002 (no. 46) to the Kauffmann-White scheme.'' In: ''Research in microbiology.'' Band 155, Nummer 7, September 2004, S. 568–570, {{ISSN|0923-2508}}. [[doi:10.1016/j.resmic.2004.04.005]]. PMID 15313257.</ref> Zwischen zehn und 20 neue Serotypen werden jährlich in diesen Aktualisierungen neu erfasst und beschrieben. In Zusammenarbeit mit der [[Weltgesundheitsorganisation]] WHO gibt Popoff in größeren Zeitabständen aktualisierte Kauffmann-White-Schemata in Buchform heraus.<ref>M. Y. Popoff: ''Antigenic formulas of the ''Salmonella'' serovars''. 8th ed. World Health Organization Collaborating Center for Reference and Research on Salmonella, Institut Pasteur, Paris, 2001</ref>

== Nomenklatur der Salmonellen ==
''Siehe auch: Hauptartikel [[Salmonella]]''

Die [[Nomenklatur]] der ''Salmonella''-Arten ist sehr komplex. Zuerst wurden Salmonellen nach klinischen Gesichtspunkten (Name der Krankheit und des [[Wirt (Biologie)|Wirts]]) benannt. Als erkannt wurde, dass die Wirtsspezifität mancher Arten nicht existiert – ''S. typhimurium'' und ''S. choleraesuis'' sind auch für den Menschen pathogen – benannte man neue Serovare als eigenständige ''Salmonella''-Arten nach dem Ort, an dem der erste Stamm der neuen Art isoliert wurde. Im Jahr 2005 entschied der Beschlussfassungsausschuss ''(Judicial Commission)'' des [[International Committee on Systematics of Prokaryotes]] (ICSP), dass die Gattung ''Salmonella'' aus zwei Arten besteht, ''S. enterica'' und ''S. bongori'', wobei ''S. enterica'' in zahlreiche [[Unterart]]en untergliedert wurde.<ref>Judicial Commission of the International Committee on Systematics of Prokaryotes. ''The type species of the genus Salmonella Lignieres 1900 is Salmonella enterica (ex Kauffmann and Edwards 1952) Le Minor and Popoff 1987, with the type strain LT2T, and conservation of the epithet enterica in Salmonella enterica over all earlier epithets that may be applied to this species. Opinion 80.'' In: ''International journal of systematic and evolutionary microbiology.'' Band 55, Pt 1, Januar 2005, S. 519–520, {{ISSN|1466-5026}}. [[doi:10.1099/ijs.0.63579-0]]. PMID 15653929.</ref><ref>B. J. Tindall, P. A. Grimont, G. M. Garrity, J. P. Euzéby: ''Nomenclature and taxonomy of the genus Salmonella.'' In: ''International journal of systematic and evolutionary microbiology.'' Band 55, Pt 1, Januar 2005, S. 521–524, {{ISSN|1466-5026}}. [[doi:10.1099/ijs.0.63580-0]]. PMID 15653930.</ref>

Diese formale, von mikrobiologischen [[Systematik (Biologie)|Systematikern]] erstellte Nomenklatur steht nicht in Einklang mit der traditionellen Systematik der Spezies ''Salmonella'' und mit der Kauffmann’schen Artbenennung aufgrund der Serovare. Mit diesem Benennungsprinzip sind jedoch die [[Facharzt|Fachärzte für Mikrobiologie]] und [[Infektiologie|Infektiologen]] seit Jahrzehnten vertraut, so dass diese eigentlich falsche Nomenklatur noch heute weit verbreitet ist und auch in den Beispielen im folgenden Artikel verwendet wird.

== Grundlagen des Kauffmann-White-Schemas ==
=== Das Prinzip des Kauffmann-White-Schemas ===
Bei der Erstellung eines Kauffmann-White-Schemas mit beispielsweise drei verschiedenen ''Salmonella''-Stämmen stehen drei gegen diese Stämme gerichtete [[Antiserum|Antiseren]] als Nachweisreagenzien zur Verfügung. In einer ersten Versuchsreihe werden die Reaktionen der Antiseren gegen den jeweiligen Ursprungsstamm und gegen die beiden anderen Stämme quantifiziert.
In einer zweiten Versuchsreihe werden die Antiseren vor der Quantifizierung mit den nicht homologen Stämmen vorbehandelt. Diese Vorbehandlung wird auch ''Präadsorption'' genannt.
Die Versuchsergebnisse werden tabellarisch zusammengefasst (4+: starke; 2+: mittlere; 0: keine Reaktion):

{| class="wikitable centered" style="background:#C6E2FF"
|-
!style="background:#B9D3EE"| Antisera
!style="background:#B9D3EE"| Stamm 1
!style="background:#B9D3EE"| Stamm 2
!style="background:#B9D3EE"| Stamm 3
|-
| Anti-1, nicht adsorbiert
| 4+
| 2+
| 4+
|-
| Anti-2, nicht adsorbiert
| 2+
| 4+
| 2+
|-
| Anti-3, nicht adsorbiert
| 4+
| 2+
| 4+
|-
| Anti-1, adsorbiert an Stamm 2
| 2+
| 0
| 2+
|-
| Anti-1, adsorbiert an Stamm 3
| 2+
| 0
| 2+
|-
| Anti-2, adsorbiert an Stamm 1
| 0
| 2+
| 0
|-
| Anti-2, adsorbiert an Stamm 3
| 0
| 2+
| 0
|-
| Anti-3, adsorbiert an Stamm 1
| 2+
| 0
| 2+
|-
| Anti-3, adsorbiert an Stamm 2
| 0
| 2+
| 0
|}

Es bestehen Unterschiede, aber auch Gemeinsamkeiten zwischen den drei Stämmen, Stamm 1 und 3 zeigen identische Reaktionsmuster, sind also serologisch identisch. Stämme 1 und 3 haben mit Bezug auf Stamm 2 sowohl Gemeinsamkeiten, als auch Unterschiede, man könnte also den Stämmen 1 und 3 in einem künstlichen System die Determinanten (oder Faktoren) A und B zuteilen, Stamm 2 die Determinanten B und C. Man könnte diese Faktoren aber auch in einem Alternativschema mit den [[Griechisches Alphabet|griechischen Buchstaben]] α, β, und γ bezeichnen. Sollte ein neu entdeckter ''Salmonella''-Stamm mit einem anderen, komplett neuartigen Antigenmuster in dieses System aufgenommen werden, wird das erweiterte Schema so aussehen:

{| class="wikitable centered" style="background:#C6E2FF"
|-
!style="background:#B9D3EE"| Antisera
!style="background:#B9D3EE"| Stamm 1
!style="background:#B9D3EE"| Stamm 2
!style="background:#B9D3EE"| Stamm 3
!style="background:#B9D3EE"| Stamm 4
|-
| Anti-1, nicht adsorbiert
| 4+
| 2+
| 4+
| 0
|-
| Anti-2, nicht adsorbiert
| 2+
| 4+
| 2+
| 0
|-
| Anti-3, nicht adsorbiert
| 4+
| 2+
| 4+
| 0
|-
| Anti-4, nicht adsorbiert
| 0
| 0
| 0
| 4+
|-
| Anti-1, adsorbiert an Stamm 2
| 2+
| 0
| 2+
| 0
|-
| Anti-1, adsorbiert an Stamm 3
| 2+
| 0
| 2+
| 0
|-
| Anti-1, adsorbiert an Stamm 4
| 0
| 0
| 0
| 2+
|-
| Anti-2, adsorbiert an Stamm 1
| 0
| 2+
| 0
| 0
|-
| Anti-2, adsorbiert an Stamm 3
| 0
| 2+
| 0
| 0
|-
| Anti-2, adsorbiert an Stamm 4
| 0
| 0
| 0
| 2+
|-
| Anti-3, adsorbiert an Stamm 1
| 2+
| 0
| 2+
| 0
|-
| Anti-3, adsorbiert an Stamm 2
| 0
| 2+
| 0
| 0
|-
| Anti-4, adsorbiert an Stamm 4
| 0
| 0
| 0
| 2+
|-
| Anti-4, adsorbiert an Stamm 1
| 0
| 0
| 0
| 2+
|-
| Anti-4, adsorbiert an Stamm 2
| 0
| 0
| 0
| 2+
|-
| Anti-4. adsorbiert an Stamm 3
| 0
| 0
| 0
| 2+
|}

Da die Antigene des Stammes 4 mit keinem Antigen der Stämme 1 bis 3 Kreuzreaktionen zeigen, wird diesem Stamm in diesem hypothetischen Schema die Determinante D (oder im Alternativschema δ) zugewiesen. Weitere neu isolierte Stämme mit differierenden Antigenmustern können in dieses Schema integriert werden.

Das Kauffmann-White-Schema basiert letztendlich auf der empirischen Auswertung von [[Antigen-Antikörper-Reaktion|Antigen-Antikörper-Kreuzreaktionen]] präadsorbierter Antiseren mit den [[Antigene|Oberflächenantigenen]] eines ''Salmonella''-Stamms.

=== Bezeichnung und Natur der Antigene ===
Salmonellen besitzen drei verschiedene Oberflächenantigene, die '''H''', '''O''' und '''Vi'''-Antigene genannt werden. Als diese Bezeichnungen eingeführt wurden, wusste man nichts über die Funktion und genaue Lokalisation dieser Antigene.
[[Datei:Kauffmann-White-Schema Antigen.svg|mini|Schematische Darstellung der H-, O- und Vi-Antigene auf der Zelloberfläche eines Bakteriums]]
Die Bezeichnung '''H''' wurde erstmals zur Beschreibung des Schwarmverhaltens von ''[[Proteus mirabilis]]'' benutzt. Im halbfesten [[Agar]] bewegen sich ''P. mirabilis'' und auch Salmonellen dank ihrer [[peritrich]]en (d. h. über die ganze Zelloberfläche verteilten) [[Flagellum|Flagellen]] schnell fort, das Erscheinungsbild einer schwärmenden Kolonie ähnelt einem '''H'''auch, den der menschliche Atem in Form von Wassertröpfchen beim Anhauchen einer Glasplatte hinterlässt. H-Antikörper sind gegen die Geißelproteine gerichtet. Die meisten ''Salmonella''-Serovare besitzen zwei verschiedene Arten von Geißelantigenen. Diese werden auch als ''Phasen'' bezeichnet. In einer Einzelkolonie kommt hauptsächlich eine Phase vor. Mit einer Frequenz von 10−3 bis 10−5 findet in diesem Klon ein Wechsel von der einen zur anderen statt. Das heißt:
* Eine von Hundert bzw. eine von Zehntausend Zellen in einer Kolonie wechselt zur anderen Phase.
* Der [[Phänotyp]] der Einzelzelle ist monophasisch, der [[Genotyp]] und die Population sind dagegen biphasisch. Nur wenige Serovare (z. B. ''Salmonella'' Enteritidis, ''Salmonella'' Typhi) sind ausschließlich monophasisch, besitzen also nur ein Geißelantigen. Die H-Antigene der ersten Phase tragen als Bezeichnung Buchstaben, die der zweiten Phase arabische Ziffern, selten auch Buchstaben.

Das '''O''' stand ursprünglich nur für '''o'''hne Hauch, das bedeutet, diese Bakterien schwärmen nicht auf einer Agarplatte aus. Die O-Antigene wurden zuerst bei unbegeißelten Bakterienstämmen gefunden. O-Antikörper sind gegen die [[Lipopolysaccharid]]e der Zelloberfläche gerichtet. Man unterscheidet zwischen Haupt-O-Antigenen, die die Gruppenzugehörigkeit der Serovare bestimmen und minor-O-Antigenen. Die minor-O-Antigene kommen meist bei vielen Serovaren vor (Beispielsweise haben alle ''Salmonella''-Stämme aus O-Gruppen A, B, and D das Antigen O:12) und sind also für Klassifizierungszwecke von geringer Bedeutung.

Die Bezeichnung '''Vi''' steht für ein zusätzliches Oberflächenantigen, das zunächst primär für [[Virulenz|'''Vi'''rulenz]] verantwortlich gemacht wurde; es stellt jedoch einen Spezialfall eines [[Glykokalyx|'''K'''apsel]]-Antigens dar. Die O-Antigen enthaltende Lipopolysaccharidschicht ist mit der dünnen Schicht des Vi-Antigens, eines Polysaccharids überzogen. Vi-Antigene kommen nur bei ''Salmonella'' Typhi, ''Salmonella'' Paratyphi C und ''Salmonella'' Dublin vor und verhindern eine Reaktion der Bakterien mit O-Antikörpern.

=== Praktische Durchführung der Antigen-Antikörper-Reaktionen ===
Vor der Durchführung der Antigen-Antikörper-Reaktionen werden Vorversuche durchgeführt, um zu überprüfen, ob unspezifische [[Agglutinine|Agglutinationen]] stattfinden. Dazu wird auf einem Objektträger etwas Bakterienmaterial in physiologischer Kochsalzlösung verrieben und die Suspension wird vor einem schwarzen Hintergrund (schwarzes [[Tonpapier]], schwarze Kachel) beobachtet. Sofern die Suspension während etwa 5 Minuten milchig trüb bleibt, findet keine Spontanagglutination statt. Um Sicherheit zu schaffen, dass tatsächlich mit einem ''Salmonella''-Stamm gearbeitet wird, kann mit einem [[omnivalent]]en [[Antiserum]] (einem Antiserum, das alle Antigene erkennt) gegen O-Antigene eine [[Positivkontrolle]] durchgeführt werden. Dazu wird etwas Bakterienmaterial mit dem Antiserum verrieben. Nach etwa zwei Minuten sollten auf schwarzem Hintergrund deutlich sichtbare Agglutinate auftreten. Dieses Verfahren wird [[Objektträger]]agglutination genannt.

In der folgenden Bestimmung wird zuerst mit Hilfe gruppenspezifischer O-Antigene in der Objektträgeragglutination die Gruppenzugehörigkeit ermittelt. Danach wird mit Hilfe der H-Antiseren mit der Objektträgeragglutination die vorliegende Geißelphase ermittelt. Hierbei zeigt sich ein Unterschied: Die Antigen-Antikörper-Aggregate sind beim O-Antigen fest und körnig, während sie beim H-Antigen flockig und wenig beständig sind. Ist die erste Phase des H-Antigens ermittelt, erfolgt die Bestimmung der zweiten Phase. Dazu wird eine Schwärmplatte hergestellt, die das entsprechende H-Antiserum enthält. Das Schwärmen der Bakterien, die der ersten Phase angehören, wird dadurch unterdrückt. Nur solche, die in die zweite Phase umgeschaltet haben, können sich unter diesen Bedingungen bewegen. Nach Bebrütung über Nacht kann mit Bakterienmaterial aus der Schwärmzone die zweite Phase durch Agglutination mit geeigneten H-Antiseren bestimmt werden.

Aus der Kombination O-Antigene, H-Antigene der ersten und zweiten Phase kann das Serovar des vorliegenden ''Salmonella''-Stamms aus dem Kauffmann-White-Schema bestimmt werden. Siehe auch<ref>Ruhr-Universität Bochum: {{Webarchiv|url=http://memiserf.medmikro.ruhr-uni-bochum.de/OnlineSkript/Skript4.html | wayback=20080208102149 | text=Skript zur praktischen Durchführung der Antigen-Antikörperreaktionen}}</ref>

== Ein einfaches Kauffmann-White-Schema ==
In der folgenden Tabelle werden einige wichtige ''Salmonella''-Serovare nach dem Kauffmann-White-Schema klassifiziert, wobei die klassische Nomenklatur benutzt wird:

{| class="wikitable centered" style="background:#C6E2FF"
|-
!style="background:#B9D3EE"| „O“-Gruppe
!style="background:#B9D3EE"| Serovar
!style="background:#B9D3EE"| „O“ Antigene
!style="background:#B9D3EE"| „H“ Antigene Phase 1
!style="background:#B9D3EE"| „H“ Antigene Phase 2
|-
| Gruppe A
| ''Salmonella'' Paratyphi A
| 1, 2, 12
| A
| keine Phase 2
|-
| Gruppe B
| ''Salmonella'' Paratyphi B
| 1, 4, 5, 12
| B
| 1, 2
|-
| Gruppe B
| [[Salmonella Typhimurium|''Salmonella'' Typhimurium]]
| 1, 4, 5, 12
| I
| 1, 2
|-
| Gruppe B
| ''Salmonella'' Abortusovis
| 4, 12
| C
| 1,6
|-
| Gruppe C
| ''Salmonella'' Choleraesuis
| 6, 7
| C
| 1,5
|-
| Gruppe C
| ''Salmonella'' Thompson
| 6, 7
| K
| 1, 5
|-
| Gruppe C
| ''Salmonella'' Newport
| 6, 8
| R
| 1, 5
|-
| Gruppe C
| ''Salmonella'' Muenchen
| 6, 8
| D
| 1, 2
|-
| Gruppe D
| ''Salmonella'' Typhi
| 9, 12
| D
| keine Phase 2
|-
| Gruppe D
| ''Salmonella'' Enteritidis
| 1, 9, 12
| g, m
| keine Phase 2
|-
| Gruppe D
| ''Salmonella'' Dublin
| 1, 9, 12
| 91 p
| keine Phase 2
|-
| Gruppe E
| ''Salmonella'' Anatum
| 3, 10
| e, h
| 1, 6
|}

== Auswahl der Antiseren ==
Der Aufwand, ein vollständiges Lager an Antiseren für die Durchführung eines kompletten Kauffmann-White-Schemas herzustellen und zu verwalten, ist groß. Dies wird vornehmlich in nationalen [[Referenzlabor]]en vorgenommen. Die meisten Labore halten nur eine bestimmte Anzahl an Antiseren vorrätig, wobei sich die Auswahl der Antiseren an der wahrscheinlich zu bearbeitenden Salmonellen-Serovare orientiert. Um Resultate zu erzielen, die zwischen den Laboren vergleichbar sind, hat die WHO Standards für die Herstellung der Antiseren vorgeschrieben.<ref>M. Y. Popoff: ''Guidelines for the preparation of ''Salmonella'' antisera''. 5th ed. World Health Organization Collaborating Centre for Reference and Research on Salmonella, Institut Pasteur, Paris 2002</ref>

Eine oft anzutreffende Auswahl sieht folgendermaßen aus:

{| class="wikitable centered" style="background:#C6E2FF"
|-
!style="background:#B9D3EE"| O-Antisera
!style="background:#B9D3EE"| H-Antisera
|-
| Polyvalent-O, Gruppen A–G
| Polyvalent-H, spezifisch und unspezifisch
|-
| 2-O, Gruppe A
| Polyvalent-H, unspezifische Faktoren 1,2,5,6,7
|-
| 4-O, Gruppe B
| a-H (''Salmonella'' Paratyphi A)
|-
| 6, 7-O, Gruppe C1
| b-H (''Salmonella'' Paratyphi B)
|-
| 8-O, Gruppe C2
| c-H (''Salmonella'' Paratyphi C)
|-
| 9-O, Gruppe D
| d-H (''Salmonella'' Typhi)
|-
| 3, 10, 15, 19-O Gruppe E
| e,h-H (''Salmonella'' Newport)
|-
| 11-O, Gruppe F
| f,g-H (''Salmonella'' Derby)
|-
| 13, 22-O, Gruppe G
| g,m-H (''Salmonella'' Enteritidis)
|-
|  
| i-H (''Salmonella'' Typhimurium)
|-
|  
| k-H (''Salmonella'' Thompson)
|-
|  
| l,v-H (''Salmonella'' London)
|-
|  
| m,t-H (''Salmonella'' Oranienburg)
|-
|  
| r-H (''Salmonella'' Bovismorbificans)
|}

Labore, die sich mit Typhuserregern beschäftigen, halten auch Antiseren gegen Vi-Antigene bereit.

Ein Satz „Schnelldiagnostiksera“ (''rapid diagnostic sera'' oder ''RDS'') wird auch angewandt: Er wird für die Bestimmung häufig vorkommender H-Antigene mit Ausnahme von i-H eingesetzt. Sofern die Agglutination mit einem polyvalenten H-spezifischen Antiserum (einem Antiserum, das mehrere H-Antigene erkennt) und einem unspezifischen Antiserum positiv verläuft, werden die drei RDS Antisera eingesetzt, um das H-Antigen zu identifizieren. Aus dem Muster Agglutination-Nichtagglutination kann das jeweilige H-Antigen bestimmt werden.

{| class="wikitable centered" style="background:#C6E2FF"
|-
!style="background:#B9D3EE"| Antigen
!style="background:#B9D3EE"| RDS1
!style="background:#B9D3EE"| RDS2
!style="background:#B9D3EE"| RDS3
|-
| b
| Agglutination
| Agglutination
| keine Agglutination
|-
| d
| Agglutination
| keine Agglutination
| Agglutination
|-
| E
| Agglutination
| Agglutination
| Agglutination
|-
| G
| keine Agglutination
| keine Agglutination
| Agglutination
|-
| k
| keine Agglutination
| Agglutination
| Agglutination
|-
| L
| keine Agglutination
| Agglutination
| keine Agglutination
|-
| r
| Agglutination
| keine Agglutination
| keine Agglutination
|}

* E = polyvalent für die Antigene eh, enx, ''etc''.
* G = polyvalent für die Antigene gm, gp, ''etc''.
* L = polyvalent für die Antigene lv, lw, ''etc''.

== Neuere Entwicklungen ==
Das konventionelle Verfahren zur Bestimmung der Zusammensetzung der Oberflächenantigene ist zeit- und materialaufwändig. Die gleichzeitige Detektion von O- und H-Antigenen ist wünschenswert. Dazu wurden nach dem Kauffmann-White-Schema ausgewählte Antikörper in einem Protein-[[Microarray]] auf einen Objektträger aufgebracht und mit [[Fluoreszenz#Fluoreszierende Stoffe (Auswahl)|Fluoreszenzfarbstoffen]] markierten ''Salmonella''-Zellen behandelt.<ref>''Development of a novel protein microarray method for serotyping Salmonella enterica strains.'' In: ''Journal of clinical microbiology.'' Band 43, Nummer 7, Juli 2005, S. 3427–3430, {{ISSN|0095-1137}}. [[doi:10.1128/JCM.43.7.3427-3430.2005]]. PMID 16000469. {{PMC|1169117}}.</ref> Diese Miniaturisierung ist jedoch noch nicht Routine im Diagnostiklabor.

== Literatur ==
* Patrick A.D. Grimont & François-Xavier Weill: [https://www.pasteur.fr/sites/default/files/veng_0.pdf Antigenic Formular of the Salmonella Serovars] (englisch) 9. Auflage. 2007, herausgegeben vom [[Weltgesundheitsorganisation|WHO]] Collaborating Centre for Reference and Research on Salmonella und dem [[Institut Pasteur]]

== Weblinks ==
* [https://www.rki.de/DE/Content/Infekt/NRZ/Salmonellen/salmo_node.html Webseite] des [[Nationales Referenzzentrum|Nationalen Referenzzentrums]] für Salmonellen und andere bakterielle Enteritiserreger, RKI Bereich Wernigerode

== Einzelnachweise ==
<references />

{{Lesenswert|14. September 2006|21457514}}

[[Kategorie:Bakteriologie]]
[[Kategorie:Mikrobiologisches Testverfahren]]
[[Kategorie:Immunchemisches Testverfahren]]
[[Kategorie:Salmonellose]]

Kauffmann-White-Schema - Versionsgeschichte

84.58.217.62: Zeilenumbruch hier nicht notwendig