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	<title>Endoreplikation - Versionsgeschichte</title>
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	<subtitle>Versionsgeschichte dieser Seite in Wikipedia (Deutsch) – Lokale Kopie</subtitle>
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		<title>imported&gt;Fan-vom-Wiki: leere Seitenangabe entf</title>
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		<updated>2026-03-14T21:38:44Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;leere Seitenangabe entf&lt;/p&gt;
&lt;p&gt;&lt;b&gt;Neue Seite&lt;/b&gt;&lt;/p&gt;&lt;div&gt;{{Infobox GO-Terminus&lt;br /&gt;
| Typ = P&lt;br /&gt;
| GO = 0042023&lt;br /&gt;
| Eltern = [[Zellzyklus]]&lt;br /&gt;
}}&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Endoreplikation&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039; (auch &amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Polyploidisierung&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039; im weiteren Sinn) ereignet sich in [[Somatische Zelle|somatischen]] Geweben durch Programmänderungen des mitotischen [[Zellzyklus]] zum Endozyklus. Zwar [[Replikation|repliziert]] die [[DNA]] (in mehreren Zyklen), aber der Zellkern und somit auch die Zelle teilen sich nicht und werden größer. Den Vorgang nennt man &amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Endoreduplikation&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;, wenn der DNA-Gehalt jeweils exakt verdoppelt wird, und zwar von &amp;#039;&amp;#039;2&amp;amp;nbsp;C&amp;#039;&amp;#039; nach &amp;#039;&amp;#039;4&amp;amp;nbsp;C&amp;#039;&amp;#039; → &amp;#039;&amp;#039;8&amp;amp;nbsp;C&amp;#039;&amp;#039; → &amp;#039;&amp;#039;16&amp;amp;nbsp;C&amp;#039;&amp;#039; → &amp;#039;&amp;#039;32&amp;amp;nbsp;C&amp;#039;&amp;#039; usw. Der DNA-Gehalt wird an [[Interphase]]-Kernen mittels [[Durchflusszytometrie|Durchfluss-]] oder Mikroskop-Fotometrie bestimmt. Der &amp;#039;&amp;#039;C&amp;#039;&amp;#039;-Wert steht für die Größe des (haploiden) [[Genom]]s einer bestimmten biologischen [[Art (Biologie)|Art]].&amp;lt;ref&amp;gt;Swift Hewson Hoyt: &amp;#039;&amp;#039;The constancy of desoxyribose nucleic acid in plant nuclei.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Proceedings of the National  Academy of Sciences USA.&amp;#039;&amp;#039; 36/1950, S. 643–654.&amp;lt;/ref&amp;gt; Ein &amp;#039;&amp;#039;C&amp;#039;&amp;#039;-Wert wird in [[Pikogramm]] (pg) oder [[Basenpaar|Megabasenpaaren]] (Mbp) angegeben (Pflanzen-Genome&amp;lt;ref&amp;gt;{{cite web | url=http://data.kew.org/cvalues/ | title=Plant DNA C-values Database | publisher=Royal Botanic Gardens | author=MD Bennett and IJ Leitch | language=englisch | accessdate=2019-03-27 | archiveurl=https://web.archive.org/web/20130809205744/http://data.kew.org/cvalues/ | archivedate=2013-08-09 | url-status=live | archivebot=2023-12-18 06:51:34 InternetArchiveBot }}&amp;lt;/ref&amp;gt;, Tier-Genome&amp;lt;ref&amp;gt;{{cite web | url=http://www.genomesize.com/search.php | title=Animal Genome Size Database | publisher=T. Ryan Gregory | language=englisch | accessdate=2019-03-27}}&amp;lt;/ref&amp;gt;). Da der Wert &amp;#039;&amp;#039;4&amp;amp;nbsp;C&amp;#039;&amp;#039; dem DNA-Gehalt gleicht, den eine [[Interphase|S-Phase]] im mitotischen Zyklus produziert, ist ein endoreplizierter Interphasekern erst ab &amp;#039;&amp;#039;8&amp;amp;nbsp;C&amp;#039;&amp;#039; zu erkennen.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Endoreplikation kommt in der normalen Entwicklung bei [[Eukaryoten]] vor: bei Einzellern, bei Pflanzen und bei Tieren.&amp;lt;ref&amp;gt;Lee H.O., Davidson J.M., Duronio Robert J.: &amp;#039;&amp;#039;Endoreplication - Polyploidy with purpose.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Genes &amp;amp; Development.&amp;#039;&amp;#039; 23/2009, S. 2461–2477. {{DOI|10.1101/gad.1829209}}.&amp;lt;/ref&amp;gt; Beispiele sind die Endosperm- und die Trichom-Entwicklung in Pflanzen generell, das Fruchtgewebe der Tomate.&amp;lt;ref&amp;gt;FAZ: &amp;#039;&amp;#039;[http://www.faz.net/aktuell/wissen/natur/botanik-kaum-bekannt-weit-verbreitet-11529784.html Kaum bekannt, weit verbreitet]&amp;#039;&amp;#039; (gesehen am 23. November 2011).&amp;lt;/ref&amp;gt;&amp;lt;ref&amp;gt;{{Literatur|Autor=Inzé Dirk|Titel=The cell cycle control and plant development|Verlag=Wiley|ISBN=1405150432|Online={{Google Buch | BuchID = skepMsSrw_wC }}}}&amp;lt;/ref&amp;gt; Die Kerne der larvalen Spinndrüsen der Mehlmotte erreichen mit 12 Endozyklen bis zu &amp;#039;&amp;#039;8.192&amp;amp;nbsp;C&amp;#039;&amp;#039; DNA,&amp;lt;ref&amp;gt;Buntrock Lydia, Marec František, Krueger Sarah, Traut Walther: &amp;#039;&amp;#039;Organ growth without cell division – Somatic polyploidy in a moth, Ephestia kuehniella.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Genome.&amp;#039;&amp;#039; 55/2012, S. 755–763. {{DOI|10.1139/g2012-060}}.&amp;lt;/ref&amp;gt; die des Seidenspinners mit 17 Endozyklen etwa &amp;#039;&amp;#039;300.000&amp;amp;nbsp;C&amp;#039;&amp;#039;.&amp;lt;ref&amp;gt;Niranjanakumari Somashekarappa and Gopinathan Karumathil P.: &amp;#039;&amp;#039;Characterisation of the DNA-polymerase-alpha-primase complex from the silk glands of Bombyx mori.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;European Journal of Biochemistry.&amp;#039;&amp;#039; 201/1991. S. 431–438. {{DOI|10.1111/j.1432-1033.1991.tb16301.x}}.&amp;lt;/ref&amp;gt;&lt;br /&gt;
Der Anteil der Endoreplikation am globalen Biomassewachstum dürfte bis zu fünfzig Prozent betragen. Der Vorteil liegt in einer erhöhten [[Proteinbiosynthese]] und damit einem leistungsfähigeren Stoffwechsel. Der Nachteil ist das Risiko, dass Zellen unkontrolliert wachsen; dies erfordert eine genaue Regulation der Endoreplikation.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Lässt ein endoreplizierter Zellkern [[Chromosom]]en erkennen, sind an deren Gestalt zwei Typen der Endoreplikation zu unterscheiden: die offensichtliche &amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Polyploidie&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039; und die &amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Polytänie&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;. Zwischen beiden kann es Übergangsformen geben.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Polyploidie ==&lt;br /&gt;
Auf eine Endoreplikation des lockeren [[Chromatin]]s in einer S-Phase (Interphase) folgt wie stets eine G-Phase. Die [[Endomitose]] beginnt mit einer Endoprophase, in der die Chromosomen kondensieren. Ihre Tochter-[[Chromatide]]n trennen sich und können in einer Endometaphase &amp;#039;&amp;#039;gezählt&amp;#039;&amp;#039; werden. Echte polyploide (vielfache) Sätze zeigen bei vorhandenen Kernmembranen 4&amp;amp;nbsp;n, 8&amp;amp;nbsp;n, 16&amp;amp;nbsp;n, 32&amp;amp;nbsp;n usw. Chromosomen. Solche Kerne heißen (griechisch) &amp;#039;&amp;#039;tetraploid, oktoploid, dekaexiploid, trianta-dyo-ploid&amp;#039;&amp;#039; usw. Den Zahlen entsprechend sollte der gesamte DNA-Gehalt solcher Zellkerne &amp;#039;&amp;#039;4&amp;amp;nbsp;C, 8&amp;amp;nbsp;C, 16&amp;amp;nbsp;C, 32&amp;amp;nbsp;C&amp;#039;&amp;#039; usw. betragen. Endomitosen beschrieb erstmals [[Lothar Geitler]].&amp;lt;ref&amp;gt;Geitler Lothar: &amp;#039;&amp;#039;Die Analyse des Kernbaus und der Kernteilung der [[Wasserläufer]] Gerris lateralis und Gerris lacustris (Hemiptera Heteroptara) und die Somadifferenzierung.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Zeitschrift für Zellforschung und mikroskopische Anatomie.&amp;#039;&amp;#039; 26/1937, S. 641–672.&amp;lt;/ref&amp;gt;&amp;lt;ref&amp;gt;Geitler Lothar: &amp;#039;&amp;#039;Die Entstehung der polyploiden Somakerne der [[Heteroptera|Heteropteren]] durch Chromosomenteilung ohne Kernteilung.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Chromosoma.&amp;#039;&amp;#039; 1/1939, S. 1–22.&amp;lt;/ref&amp;gt;&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Polytänie ==&lt;br /&gt;
Nach Endoreplikationen in zeitlich getrennten S-Phasen bleiben die mütterlichen und die väterlichen Chromatiden verbunden. Deswegen zeigen solche Zellkerne vielsträngige (polytäne) Riesenchromosomen in diploider Anzahl (2&amp;amp;nbsp;n). Wenn sich darüber hinaus die mütterlichen mit den väterlichen Chromatiden verbinden, zeigen solche Zellkerne &amp;#039;&amp;#039;somatisch gepaarte&amp;#039;&amp;#039; [[Polytänchromosom]]en&amp;lt;ref&amp;gt;[[Hans Bauer (Biologe)|Bauer Hans]] und [[Wolfgang Beermann|Beermann Wolfgang]]: &amp;#039;&amp;#039;Die Polytänie der Riesenchromosomen.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Chromosoma.&amp;#039;&amp;#039; 4/1952, S. 630–648.&amp;lt;/ref&amp;gt; in haploider Anzahl (1&amp;amp;nbsp;n). Beim letzteren Chromosomentyp sind mitunter Paarungslücken zwischen den elterlichen Chromatidensträngen zu beobachten. Unvollständige Paarung ergibt sich zwingend, wenn sich die Partner durch [[Mutation|mutierte]] Abschnitte unterscheiden.&amp;lt;ref&amp;gt;Beermann Wolfgang: &amp;#039;&amp;#039;Riesenchromosomen.&amp;#039;&amp;#039; Springer, Wien 1962. S. 54 ff: &amp;#039;&amp;#039;Der Paarungsmodus und seine Varianten.&amp;#039;&amp;#039;&amp;lt;/ref&amp;gt;&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Polytänie ist etwa ab einem DNA-Gehalt von &amp;#039;&amp;#039;32&amp;amp;nbsp;C&amp;#039;&amp;#039; (nach der vierten Endoreplikation) im Lichtmikroskop zu erkennen. Da die verbundenen Chromatiden kaum zu zählen sind, werden Polytäniestufen durch Mikrofotometrie bestimmt. Polytäne Chromosomen wurden erstmals bei der [[Bibio hortulanus|Gartenhaarmücke]] nachgewiesen.&amp;lt;ref&amp;gt;[[Emil Heitz (Botaniker)|Heitz Emil]] und Bauer Hans: &amp;#039;&amp;#039;Beweise für die Chromosomennatur der Kernschleifen in den Knäuelkernen von Bibio hortulanus L. Cytologische Untersuchungen an Dipteren: I.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Zeitschrift für Zellforschung und mikroskopische Anatomie.&amp;#039;&amp;#039; 17/1933, S. 67–82.&amp;lt;/ref&amp;gt; Vor allem mit der [[Taufliegen|Taufliege]] &amp;#039;&amp;#039;Drosophila melanogaster&amp;#039;&amp;#039; wurde die [[Zytogenetik]] der Polytänie etabliert.&amp;lt;ref&amp;gt;Koltzoff Nikolai K.: &amp;#039;&amp;#039;The structure of the chromosomes in the salivary glands of Drosophila&amp;#039;&amp;#039;. In: &amp;#039;&amp;#039;Science&amp;#039;&amp;#039;. 80/1934, S. 312–313.&amp;lt;/ref&amp;gt;&amp;lt;ref&amp;gt;Bridges Calvin B.: &amp;#039;&amp;#039;Salivary chromosome maps. With a key to the banding of the chromosomes of Drosophila melanogaster.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Journal of Heredity.&amp;#039;&amp;#039; 26/1935, S. 60–64.&amp;lt;/ref&amp;gt;&amp;lt;ref name=&amp;quot;DOI10.1038/nature10579&amp;quot;&amp;gt;Zielke Norman, Kim Kerry J. u.&amp;amp;nbsp;a.: &amp;#039;&amp;#039;Control of Drosophila endocycles by E2F and CRL4CDT2.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Nature.&amp;#039;&amp;#039; 2011, {{DOI|10.1038/nature10579}}.&amp;lt;/ref&amp;gt; Grundsätzliche Erkenntnisse über die Genaktivität in polytänen Chromosomen kamen von der [[Zuckmücken|Zuckmücke]] &amp;#039;&amp;#039;Chironomus tentans&amp;#039;&amp;#039;.&amp;lt;ref&amp;gt;Pelling Claus: &amp;#039;&amp;#039;Ribonucleinsäure-Synthese in Riesenchromosomen. Autoradiographische Untersuchungen an Chironomus tentans.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Chromosoma.&amp;#039;&amp;#039; 15/1964, S. 71–122&amp;lt;/ref&amp;gt;&amp;lt;ref&amp;gt;Pelling Claus and Allen Terrence D.: &amp;#039;&amp;#039;Scanning electron microscopy of polytene chromosomes.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Chromosome Research.&amp;#039;&amp;#039; 1/1993, S. 221–237.&amp;lt;/ref&amp;gt;&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Eine &amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Besonderheit&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039; weisen die endoreplizierenden Nährzellkerne im Ovar einiger Dipteren auf. Anfangs zeigen sie Endometaphasen mit oligotänen Chromosomen. Diese &amp;#039;&amp;#039;primären Riesenchromosomen&amp;#039;&amp;#039; zerfallen nach wenigen Endozyklen in ihre wenigen Chromatiden, mit denen nachfolgende Endozyklen morphologisch polyploide Chromosomensätze produzieren.&amp;lt;ref&amp;gt;Bier Karl: &amp;#039;&amp;#039;Endomitose und Polytänie in den Nährzellkernen von Calliphora erythrocephala Meigen.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Chromosoma.&amp;#039;&amp;#039; 8/1957, S. 493–522.&amp;lt;/ref&amp;gt;&amp;lt;ref&amp;gt;Dej Kimberley J. and Spradling Allan C.: &amp;#039;&amp;#039;The endocycle controls nurse cell polytene chromosome structure during Drosophila oogenesis.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Development.&amp;#039;&amp;#039; 126/1999, S. 293–303.&amp;lt;/ref&amp;gt;&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Selektive Endoreplikation ==&lt;br /&gt;
Jede chromosomale Replikation unterliegt strenger genetischer Kontrolle. Deswegen ist es möglich, dass nicht alle genomischen DNA-Sequenzen gleicherweise, sondern ausgewählt multipliziert werden. Solche selektive Endoreplikation gehört zum normalen Entwicklungsprogramm und wird nach ihrem relativen Ausmaß unter zwei Aspekten beschrieben: als &amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Amplifikation&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039; oder als &amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Unterreplikation&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Amplifikation ===&lt;br /&gt;
Hierbei endorepliziert lediglich kurzfristig ein kleiner Abschnitt eines Chromosoms. Solch eine lokale Genvermehrung schafft die Voraussetzung, einen entwicklungsbedingten hohen Bedarf an bestimmten Proteinen zu decken.&amp;lt;ref&amp;gt;Spradling Allan C. and Mahowald Anthony P.: &amp;#039;&amp;#039;Amplification of genes for chorion proteins during oogenesis in Drosophila melanogaster.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Proceedings of the National Academy of Sciences USA.&amp;#039;&amp;#039; 77/1980, S. 1096–1100.&amp;lt;/ref&amp;gt;&amp;lt;ref&amp;gt;Santelli Robert V., Machado-Santelli Glaucia M., Pueyo Manuel T., Navarro-Cattapan Luci Deise, Lara F. J. S.: &amp;#039;&amp;#039;Replication and transcription in the course of DNA amplification of the C3 and C8 DNA puffs of Rhynchosciara americana.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Mechanisms of Development.&amp;#039;&amp;#039; 36/1991, S. 59–66.&amp;lt;/ref&amp;gt;&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Unterreplikation ===&lt;br /&gt;
Erstmals wurde dieses Phänomen an &amp;#039;&amp;#039;Drosophila virilis&amp;#039;&amp;#039; beobachtet, bei der die Hälfte der genomischen DNA nicht an der Polytänisierung teilnimmt.&amp;lt;ref&amp;gt;Heitz Emil: &amp;#039;&amp;#039;Über α- und β-Heterochromatin sowie Konstanz und Bau der Chromomeren bei Drosophila.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Biologisches Zentralblatt.&amp;#039;&amp;#039; 54/1934, S. 588–609: dort S. 596.&amp;lt;/ref&amp;gt;&amp;lt;ref&amp;gt;Steinbrecher Ricarda A.: &amp;#039;&amp;#039;Mikrophotometrische Untersuchung der DNA-Gehalte mitotischer und polytäner Zellkerne bei der Taufliege Drosophila virilis. Diplomarbeit.&amp;#039;&amp;#039; Universität Kiel 1985.&amp;lt;/ref&amp;gt; Der spezifische Ausschluss [[Heterochromatin|heterochromatischer]], repetitiver DNA von der Endoreplikation beginnt bereits in der späten Embryonalentwicklung.&amp;lt;ref&amp;gt;Smith A. V. and Orr-Weaver Terry L.: &amp;#039;&amp;#039;The regulation of the cell cycle during Drosophila embryogenesis. The transition to polyteny.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Development.&amp;#039;&amp;#039; 112/1991, S. 997–1008.&amp;lt;/ref&amp;gt; Besonders augenfällig wirkt sich Unterreplikation aus, wenn sie hauptsächlich ein einziges Chromosomenpaar betrifft.&amp;lt;ref&amp;gt;Cordeiro-Stone Marila and Lee C. S.: &amp;#039;&amp;#039;Studies on the satellite DNAs of Drosophila nasutoides. Their buoyant densities, melting temperatures, reassociation rates and localizations in polytene chromosomes.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Journal of Molecular Biology.&amp;#039;&amp;#039; 104/1976, S. 1–24.&amp;lt;/ref&amp;gt;&amp;lt;ref&amp;gt;Zacharias Helmut: &amp;#039;&amp;#039;Tissue-specific schedule of selective replication in Drosophila nasutoides.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Roux’s Archive of Developmental Biology.&amp;#039;&amp;#039; 195/1986, S. 378–388.&amp;lt;/ref&amp;gt; Die Unterreplikation interkalaren Heterochromatins ist schwierig zu quantifizieren, gibt sich aber durch Schwachstellen (&amp;#039;&amp;#039;weak points&amp;#039;&amp;#039;) der Riesenchromosomen zu erkennen.&amp;lt;ref&amp;gt;Belyaeva Elena S., Andreyeva E. N., Belyakin S. N., Volkova E. I., Zhimulev Igor F.: &amp;#039;&amp;#039;Intercalary heterochromatin in polytene chromosomes of Drosophila melanogaster.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Chromosoma.&amp;#039;&amp;#039; 117/2008, S. 411–418. {{DOI|10.1007/s00412-008-0163-7}}.&amp;lt;/ref&amp;gt;&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Unterreplikation gibt es nicht nur in polytänen Strukturen, sondern kommt auch in polyploiden Zellkernen vor. Endometaphasen geben darüber Aufschluss.&amp;lt;ref&amp;gt;Nur Uzi: &amp;#039;&amp;#039;Nonreplication of heterochromatic chromosomes in a mealy bug, Planococcus citri ([[Coccoidea]]: Homoptera).&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Chromosoma.&amp;#039;&amp;#039; 19/1966, S. 439–448.&amp;lt;/ref&amp;gt; Hypothese: Heterochromatisch repetitive DNA-Sequenzen bedingen große Zellkerne und erlauben, die Embryonalentwicklung mit entsprechend großen Zellen zu beginnen. Sobald Endoreplikation einsetzt, wird auf diese Platzhalter-DNA verzichtet. Den gleichen Effekt wie Unterreplikation hat die DNA-Elimination (Chromatin-Diminution).&amp;lt;ref&amp;gt;Beermann Sigrid: &amp;#039;&amp;#039;The diminution of heterochromatic chromosomal segments in [[Hüpferlinge|Cyclops]] (Crustacea, [[Copepoda]]).&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Chromosoma.&amp;#039;&amp;#039; 60/1977, S. 297–344.&amp;lt;/ref&amp;gt;&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Humanbiologie ==&lt;br /&gt;
Auch beim Menschen (wie bei anderen Wirbeltieren, Säugern) sind endoreplizierte Zellkerne in Geweben zu finden, die offensichtlich physiologische Hochleistung erbringen. Dazu zählen Herzmuskelzellen,&amp;lt;ref&amp;gt;Sandritter Walter und Adler Claus-Peter: &amp;#039;&amp;#039;Polyploidization of heart muscle nuclei as a prerequisite for heart growth and numerical hyperplasia in heart hypertrophy.&amp;#039;&amp;#039; In: Kobayashi T., Ito Y., Rona G. (eds): &amp;#039;&amp;#039;Cardiac structure and metabolism, vol 12.&amp;#039;&amp;#039; University Park Press, Baltimore 1978, S. 115–127.&amp;lt;/ref&amp;gt; die [[Megakaryozyten]] (Riesenzellen des Knochenmarks),&amp;lt;ref&amp;gt;R. Bermejo, N. Vilaboa, C. Calés: &amp;#039;&amp;#039;Regulation of CDC6, geminin, and CDT1 in human cells that undergo polyploidization.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Molecular biology of the cell.&amp;#039;&amp;#039; Band 13, Nummer 11, November 2002, S.&amp;amp;nbsp;3989–4000, {{DOI|10.1091/mbc.E02-04-0217}}, PMID 12429841, {{PMC|133609}}.&amp;lt;/ref&amp;gt; auch bestimmte [[Neuronen]] im Nervensystem.&amp;lt;ref&amp;gt;López-Sánchez Noelia, Ovejero-Benito M. C., Borreguero L., Frade José M.: &amp;#039;&amp;#039;Control of neuronal ploidy during vertebrate development.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Results and Problems in Cell Differentiation.&amp;#039;&amp;#039; 53/2011, S. 547–563. {{doi|10.1007/978-3-642-19065-0_22}}.&amp;lt;/ref&amp;gt; Endoreplikative Zellkerne von extravillösen [[Trophoblast]]en der humanen Plazenta mit polytänen Chromosomen ermöglichen die Implantation in die Gebärmutter am Beginn einer Schwangerschaft.&amp;lt;ref&amp;gt;Zybina Eugenia V. and Zybina Tatiana G.: &amp;#039;&amp;#039;Polytene chromosomes in mammalian cells.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;International Review of Cytology.&amp;#039;&amp;#039; 165/1996, S. 53–119.&amp;lt;/ref&amp;gt;&amp;lt;ref&amp;gt;{{Literatur |Autor=Philipp Velicky, Gudrun Meinhardt, Kerstin Plessl, Sigrid Vondra, Tamara Weiss |Titel=Genome amplification and cellular senescence are hallmarks of human placenta development |Sammelwerk=PLOS Genetics |Band=14 |Nummer=10 |Datum=2018-10-12 |ISSN=1553-7404 |DOI=10.1371/journal.pgen.1007698 |Seiten=e1007698 |Online=https://journals.plos.org/plosgenetics/article?id=10.1371/journal.pgen.1007698 |Abruf=2018-11-12}}&amp;lt;/ref&amp;gt;&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
Endoreplizierte Zellkerne mit mutierten Chromosomen begleiten nicht selten die &amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;[[Tumor]]entstehung&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;. Im Gegensatz zu den oben genannten Beispielen aus der normalen Entwicklung sind sie pathologisch.&amp;lt;ref&amp;gt;Politzer Georg: &amp;#039;&amp;#039;Pathologie der Mitose.&amp;#039;&amp;#039; Borntraeger, Berlin 1934. Dort S. 154: &amp;#039;&amp;#039;Die Kerngröße im Karzinom&amp;#039;&amp;#039;; S. 157: &amp;#039;&amp;#039;Die Zahl der Chromosomen in malignen Geschwulstzellen.&amp;#039;&amp;#039;&amp;lt;/ref&amp;gt;&amp;lt;ref&amp;gt;Steinbeck Rüdiger G. und Auer Gert U.: &amp;#039;&amp;#039;Genome instability in human tumorigenesis. Microphotometry of interphase nuclei and pathologic mitoses reveals dysplasia.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;European Journal of Histochemistry.&amp;#039;&amp;#039; 44/2000, S. 133–142.&amp;lt;/ref&amp;gt;&amp;lt;ref&amp;gt;Fox Donald T. and Duronio Robert J.: &amp;#039;&amp;#039;Endoreplication and polyploidy: insights into development and disease.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Development.&amp;#039;&amp;#039; 140/2013, S. 3–12. {{DOI|10.1242/dev.080531}}.&amp;lt;/ref&amp;gt;&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Literatur ==&lt;br /&gt;
* Wenliang Qian, Hao Li, Xing Zhang, Yaohao Tang, Dongqin Yuan, Zhu Huang, Daojun Chen: &amp;#039;&amp;#039;Fzr regulates silk gland growth by promoting endoreplication and protein synthesis in the silkworm.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;PloS Genet&amp;#039;&amp;#039; 19, 1, 2023: e1010602. [https://journals.plos.org/plosgenetics/article?id=10.1371/journal.pgen.1010602 PDF.]&lt;br /&gt;
* Lukáš Koprivý, Viera Fráková, Vladislav Kolarčik, Lenka Mártonfiová, Matej Dudáš, Pavol Mártonfi: &amp;#039;&amp;#039;Genome size and endoreplication in two pairs of cytogenetically contrasting species of Pulmonaria (Boraginaceae) in Central Europe.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;AoB Plants&amp;#039;&amp;#039; 14, 5, 2022: plac036. [https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC9476981/pdf/plac036.pdf PDF.]&lt;br /&gt;
* Dmitrij Dedukh, Marie Altmanová, Jiří Klíma, Lukáš Kratochvíl: &amp;#039;&amp;#039;Premeiotic endoreplication is essential for obligate parthenogenesis in geckos.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Development&amp;#039;&amp;#039; 149, 7, 2022: dev200345. [https://journals.biologists.com/dev/article/149/7/dev200345/275038/Premeiotic-endoreplication-is-essential-for PDF.]&lt;br /&gt;
* Norman Zielke, Bruce A Edgar, Melvin L DePamphilis: &amp;#039;&amp;#039;Endoreplication.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Cold Spring Harb Perspect Biol&amp;#039;&amp;#039; 5, 1, 2013: a012948. [https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3579398/pdf/cshperspect-REP-a012948.pdf PDF.]&lt;br /&gt;
* {{Literatur |Autor=Kubiak Jacek Z. |Titel=Cell Cycle in Development |Verlag=Springer |Jahr=2011 |ISBN=3642190642 |Online = {{Google Buch | BuchID = VI3H_NBioPEC }} |Seiten=551ff }}&lt;br /&gt;
* Zau Ullah, C Y Lee, M A Lilly, Melvin L DePamphilis: &amp;#039;&amp;#039;Developmentally programmed endoreduplication in animals.&amp;#039;&amp;#039; In: &amp;#039;&amp;#039;Cell Cycle&amp;#039;&amp;#039; 8, 2009: 1501–1509.&lt;br /&gt;
* [[Eeva Therman]], Millard Susman: &amp;#039;&amp;#039;Human chromosomes. Structure, behavior, and effects.&amp;#039;&amp;#039; Third edition. Springer, New York/Berlin/Heidelberg 1993. ISBN 0-387-97871-2.&lt;br /&gt;
* Brodsky V. Y., Uryvaeva I. V.: &amp;#039;&amp;#039;Genome multiplication in growth and development. Biology of polyploid and polytene cells.&amp;#039;&amp;#039; Cambridge University Press, Cambridge, London, New York 1985. ISBN 0-521-25323-3&lt;br /&gt;
* Walter Nagl: &amp;#039;&amp;#039;Endopolyploidy and polyteny in differentiation and evolution.&amp;#039;&amp;#039; North-Holland, Amsterdam 1978.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Einzelnachweise ==&lt;br /&gt;
&amp;lt;references/&amp;gt;&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
[[Kategorie:Zellzyklus]]&lt;br /&gt;
[[Kategorie:Entwicklungsbiologie]]&lt;/div&gt;</summary>
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